Système Filta-Max xpress

Habituellement, il reste entre 0 et 50 ml dans le boîtier après l’échantillonnage. Ce reste est éliminé du boîtier lors du premier cycle de l’élution.

Oui. IDEXX fournit un kit comprenant une tige QF et un corps QC que vous pouvez adapter au boîtier MKII. IDEXX fournit également un kit d’échantillonnage que vous pouvez attacher au tube d’échantillonnage pour permettre une fixation plus rapide du logement du filtre.

• Pression d’entrée minimale : 65 psig (4,5 bar)
• Pression d’entrée maximale : 150 psig (10,3 bar)
• Pression d’utilisation : 72,5 à 116 psig (5 à 8 bar)

Le volume total est de 400-450 ml.

IDEXX a réalisé des expériences avec des oocystes et des kystes de divers âges et aucune modification de la morphologie ou de la morphométrie n’a été observée.

Les récupérations sont équivalentes ou plus élevées qu’avec Filta-Max et présentent un degré de précision plus élevé.

La machine est étalonnée lors de la fabrication et ne nécessite pas de nouvel étalonnage par la suite. Il existe des indicateurs de haute et basse pression qui permettent de contrôler la pression. L’indicateur de haute pression doit afficher 5 bars et l’indicateur de basse pression doit indiquer 0,5 bar.

IDEXX a analysé le temps moyen entre les défaillances et, même à 85 000 cycles, la station d’élution fonctionnait toujours correctement.

Bien que Filta-Max xpress ait été optimisé pour utiliser un volume total d’élution de 400-450 ml contenu dans un tube centrifuge de 500 ml, IDEXX a certifié l’utilisation d’une centrifugation de 2 x 250 ml à 1500 x g pendant 15 minutes comme procédure de remplacement. IDEXX conseille la validation de cette procédure de remplacement avant son adoption par les laboratoires.

Oui, c’est possible.

Le tampon Filta-Max xpress est imbibé de PBST (Phospate Buffered Saline with Tween 20). Pour connaître les instructions de préparation du tampon d’élution au PBST, voir la page 5 du Guide de l’opérateur (Biologique) Filta-Max xpress.

Le couvercle s’adapte aux touries de plus grand volume ayant une ouverture de 83 mm de diamètre.

Vous devez faire passer de l’eau de réactif dans la station d’élution après le dernier cycle d’élution de la journée.

Vous pouvez nettoyer la tige du QC avec un tampon imbibé d’alcool. En revanche, une pression positive est utilisée pour l’élution ; il existe donc un risque très minime de contamination croisée.

Il est conseillé de réduire au maximum les vibrations, d’équilibrer la centrifugeuse et d’utiliser une vitesse de centrifugation légèrement supérieure (2000 g).

IDEXX a testé des matrices complexes en provenance d’un large éventail de lieux.

La station d’élution utilise une pression positive pour éluer les oocystes et les kystes du module de filtre en minimisant les risques de contamination de l’unité. IDEXX fournit cinq organes de dérivation de sortie avec chaque station d’élution pour permettre à votre laboratoire de changer les organes de dérivation entre les échantillons. Vous pouvez les nettoyer manuellement ou dans un autoclave. IDEXX a effectué des recherches sur la possibilité de contamination croisée en utilisant des taux élevés d’organismes cibles (par exemple : 106) et aucune preuve de contamination croisée n’a été trouvée.